欢迎来到医学美容教育网,现在是

医学美容教育网

中国首家医学美容在线学习平台
致力于提供专业医学美容教育服务的网站

富血小板血浆(PRP)常温保存前后PDGF―AB、TGF―β1含量变化研究

日期:2014-08-26 11:32 来源:医学美容教育网 编辑:ZHY008

【摘 要】目的:测定富血小板血浆(PRP)常温保存前后PDGF-AB、TGF-β1含量变化,评价其促进组织修复能力。方法:白膜回浆法制备PRP,双抗体夹心ABC-ELISA法检测静脉血、PRP保存前后(激活状态下)PDGF-AB和TGF-β1含量,数据结果应用SPSS 12.5软件处理分析。 结果:静脉血、PRP保存前后PDGF-AB浓度(pg/ml)分别为:1.69±0.36、56.12±11.72、58.17±12.1。TGF-β1 浓度(pg/ml)分别为:56.19±14.55、331.12±64.94、365.55±73.13。静脉血制备PRP后,PDGF-AB、TGF-β1含量明显升高。SPRP组与FPRP组比较,PDGF-AB浓度无显著性差异(P>0.05)、TGF-β1浓度有显著性差异(P<0.05)。结论:20~24℃连续温和振荡保存三天,PRP中可释放于局部的生长因子PDGF-AB无明显变化、TGF-β1含量明显升高。

中国论文网 http://www.xzbu.com/6/view-5620585.htm

【关键词】富血小板血浆;保存;血小板源性生长因子-AB;转化生长因子-β1

【中图分类号】 R78 【文献标识码】A 【文章编号】1004-7484(2013)01-0034-02

在骨的自然修复过程中,有多种生长因子参与,其中以血小板源性生长因子-AB(Platelet-derived growth factors AB PDGF)和转化生长因子-β1 (Transforming growth factors beta 1 TGF-β1)最为重要[1]。本实验从口腔临床医学角度,研究20~24℃连续温和振荡保存后PRP中PDGF-AB、TGF-β1的含量变化,探讨其是否还具有高度的促进组织修复再生能力。为口腔临床高效制备、保存、合理利用、提高临床治疗效果及扩展PRP技术在口腔科的临床应用领域提供实验依据。

1 材料和方法

1.1 实验标本、仪器及试剂

1.1.1 实验标本 ACD-A抗凝静脉血,采用白膜回浆法制备PRP,共36例。(实验对象符合中华人民共和国献血体检标准,男27例,女9例,年龄28~43岁)

1.1.2 实验仪器及试剂 ACD-A抗凝液采血三联袋;血小板保存袋(CB-SD206C);Beckman-Conlter全自动五类血球分析仪;TGL 16G台式高速离心机;SHHW21.Cr 600三用电热恒温箱;TECAN全自动酶标扫描仪;XHZ-IIB血小板恒温振荡保存箱;牛凝血酶Sigma T-4648;PDGF-AB、TGF-β1试剂盒(ELISA)。

1.2 实验方法

1.2.1 静脉血的采集 献血前抽取2ml置于未加抗凝剂的试管中(测静脉血PDGF-AB、TGF-β1含量)。献血约200ml,每袋取ACD-A抗凝血2ml(测静脉血血小板计数),余静脉血制备PRP。

1.2.2 PRP的制备及保存 ACD-A抗凝三联袋采集约200ml静脉血,置低温离心机,于2h内离心沉淀(22℃ 3600rpm/min,10min),将上层血浆挤入1号浆袋,留白膜层以上约20ml血浆连同白膜层及部分红细胞约30ml 挤入2号浆袋,静置30~40min后,再离心沉淀(22℃ 1300rpm/min,6min),分出白膜层以上的混浊血浆约30ml,每份标本平均分为两袋,各约15ml,分别于当天和20~24℃连续温和振荡(频率60次/min)保存三天后检测PDGF-AB、TGF-β1含量。

1.2.3 血小板的激活及血清的制备

(1)静脉血血小板的激活及血清的制备 取18例非抗凝静脉血4℃保存,充分凝集后3000转/min离心20min,取上层血清转移到EP管中,用于检测静脉血PDGF-AB、TGF-β1含量。

(2) PRP中血小板的激活及血清的制备 参照临床激活的方法[2],取30例PRP标本各0.5ml,分别加入50μl凝血酶激活剂(500U牛凝血酶加入500μl 10%CaCl2溶液),数分钟后凝聚成冻胶状,常温静置60min,3000r/min离心20min,吸取上层血清转移到EP管中,得到富生长因子血清(serum rich growth factors SRGF)。

1.2.4 检测指标及方法

(1)静脉血及保存前、后PRP的PLT浓度按仪器操作说明书上机全自动操作。

(2)静脉血及保存前、后PRP中PDGF-AB、TGF-β1含量采用双抗体夹心ABC-ELISA法进行检测。

(3)分别测量两袋PRP体积。

1.3 统计学方法

计量资料结果以均值±标准差( ±s)表示,FPRP、SPRP中的PLT、PDGF-AB、TGF-β1含量采用配对t检验,行差异显著性分析。分析软件为SPSS 12.5,显著性水准为α=0.05。

2 实验结果

2.1 静脉血、FPRP、SPRP三组中PLT的检测结果

如表1所示,静脉血制备PRP后,PLT明显升高。SPRP组与FPRP组比较,PLT计数无显著性差异(P>0.05)。

2.2 静脉血血清、FPRP血清、SPRP血清PDGF-AB、TGF-β1含量检测结果

如表2所示,静脉血制备PRP后,PDGF-AB、TGF-β1含量明显升高。SPRP组与FPRP组比较,PDGF-AB浓度无显著性差异(P>0.05)、TGF-β1浓度有显著性差异(P<0.05)。

 1/2    1 2 下一页 尾页

微信扫一扫
添加368医美教育网

扫一扫医学美容教育网微信二维码

医学美容在线学习平台